Täname teid Nature.com-i külastamise eest. Teie kasutataval brauseri versioonil on piiratud CSS-i tugi. Parima tulemuse saavutamiseks soovitame teil kasutada brauseri uuemat versiooni (või keelata Internet Exploreris ühilduvusrežiimi). Seni aga kuvame saiti ilma stiili ja JavaScriptita, et tagada pidev tugi.
Lopsaka välimusega dekoratiivsed lehestikuga taimed on kõrgelt hinnatud. Üks viis selle saavutamiseks on kasutadataimekasvuregulaatoridtaimekasvu juhtimise vahenditena. Uuring viidi läbi Schefflera kääbuslilliga (dekoratiivne lehestiktaim), mida töödeldi lehtedele pritsimisegagibberelliinhapeja bensüüladeniinhormooni kasvuhoones, mis oli varustatud udu niisutussüsteemiga. Hormooni pihustati kääbusšaflera lehtedele kontsentratsioonides 0, 100 ja 200 mg/l kolmes etapis iga 15 päeva järel. Katse viidi läbi faktoriaalsel alusel täielikult randomiseeritud disainil nelja kordusega. Giberelliinhappe ja bensüüladeniini kombinatsioon kontsentratsioonis 200 mg/l avaldas olulist mõju lehtede arvule, lehtede pindalale ja taime kõrgusele. See töötlus andis tulemuseks ka kõrgeima fotosünteetiliste pigmentide sisalduse. Lisaks täheldati kõrgeimaid lahustuvate süsivesikute ja redutseerivate suhkrute suhteid bensüüladeniini puhul kontsentratsioonidel 100 ja 200 mg/l ning giberelliinhappe + bensüüladeniini puhul kontsentratsioonil 200 mg/l. Astmeline regressioonanalüüs näitas, et esimesena mudelisse sisenes juurte maht, mis selgitas 44% variatsioonist. Järgmine muutuja oli värske juure mass, kusjuures kahemõõtmeline mudel selgitas 63% lehtede arvu variatsioonist. Lehtede arvule avaldas suurimat positiivset mõju värske juure kaal (0,43), mis oli positiivses korrelatsioonis lehtede arvuga (0,47). Tulemused näitasid, et giberelliinhape ja bensüüladeniin kontsentratsioonis 200 mg/l parandasid oluliselt Liriodendron tulipifera morfoloogilist kasvu, klorofülli ja karotenoidide sünteesi ning vähendasid suhkrute ja lahustuvate süsivesikute sisaldust.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr on igihaljas ilutaim araliaceae perekonnast, mis on pärit Hiinast ja Taiwanist1. Seda taime kasvatatakse sageli toataimena, kuid sellistes tingimustes saab kasvada ainult üks taim. Lehtedel on 5 kuni 16 lehekest, igaüks 10–20 cm2 pikk. Kääbus-schefflerat müüakse igal aastal suurtes kogustes, kuid tänapäevaseid aiandusmeetodeid kasutatakse harva. Seetõttu vajab taimekasvuregulaatorite kasutamine tõhusate majandamisvahenditena aiandustoodete kasvu ja säästva tootmise parandamiseks suuremat tähelepanu. Tänapäeval on taimekasvuregulaatorite kasutamine märkimisväärselt suurenenud3,4,5. Gibberelliinhape on taimekasvuregulaator, mis võib suurendada taimede saagikust6. Üks selle teadaolevatest mõjudest on vegetatiivse kasvu stimuleerimine, sealhulgas varre ja juurte pikenemine ning lehtede pindala suurenemine7. Gibberelliinide kõige olulisem mõju on varre kõrguse suurenemine vahede pikenemise tõttu. Gibberelliinide lehtedele pritsimine kääbustaimedel, mis ei suuda gibberelliine toota, suurendab varre pikenemist ja taime kõrgust8. Õite ja lehtede lehtede pritsimine gibberelliinhappega kontsentratsioonis 500 mg/l võib suurendada taimede kõrgust, lehtede arvu, laiust ja pikkust9. On teatatud, et gibberelliinid stimuleerivad mitmesuguste laialeheliste taimede kasvu10. Hariliku männi (Pinussylvestris) ja valge kuuse (Piceaglauca) puhul täheldati varre pikenemist, kui lehti pritsiti gibberelliinhappega11.
Ühes uuringus uuriti kolme tsütokiniini taimekasvuregulaatori mõju hariliku liilia külgmiste okste moodustumisele. Katsed viidi läbi sügisel ja kevadel, et uurida hooajalisi mõjusid. Tulemused näitasid, et kinetiin, bensüüladeniin ja 2-prenüüladeniin ei mõjutanud täiendavate okste moodustumist. 500 ppm bensüüladeniini tulemuseks oli aga sügis- ja kevadkatsetes vastavalt 12,2 ja 8,2 kõrvalharu moodustumine, võrreldes kontrolltaimede 4,9 ja 3,9 oksaga. Uuringud on näidanud, et suvised töötlemised on talvistest tõhusamad12. Teises katses töödeldi rahuliilia (Peace Lily var. Tassone) taimi 10 cm läbimõõduga pottides 0, 250 ja 500 ppm bensüüladeniiniga. Tulemused näitasid, et mullatöötlus suurendas oluliselt täiendavate lehtede arvu võrreldes kontroll- ja bensüüladeniiniga töödeldud taimedega. Uusi täiendavaid lehti täheldati neli nädalat pärast töötlemist ja maksimaalset lehtede tootmist täheldati kaheksa nädalat pärast töötlemist. 20 nädalat pärast töötlemist oli mullaga töödeldud taimedel väiksem kõrguse juurdekasv kui eeltöödeldud taimedel13. On teatatud, et 20 mg/l kontsentratsioonis bensüüladeniin võib Croton 14 puhul oluliselt suurendada taimede kõrgust ja lehtede arvu. Kalladel suurendas 500 ppm kontsentratsioonis bensüüladeniin okste arvu, samas kui kontrollrühmas oli okste arv kõige väiksem15. Selle uuringu eesmärk oli uurida gibberelliinhappe ja bensüüladeniini lehtedele pritsimist, et parandada ilutaime Schefflera dwarf kasvu. Need taimekasvuregulaatorid aitavad kommertskasvatajatel planeerida aastaringselt sobivat tootmist. Liriodendron tulipifera kasvu parandamiseks ei ole uuringuid läbi viidud.
See uuring viidi läbi Islamic Azadi ülikooli toataimede uurimiskasvuhoones Jiloftis, Iraanis. Valmistati ette 25 ± 5 cm kõrgused ühtlase juurega kääbusšeflera istikud (paljundati kuus kuud enne katset) ja külvati pottidesse. Pott on plastmassist, musta värvi, läbimõõduga 20 cm ja kõrgusega 30 cm16.
Käesolevas uuringus oli kultuurikeskkond turba, huumuse, pestud liiva ja riisikestade segu vahekorras 1:1:1:1 (mahu järgi)16. Asetage poti põhja drenaažiks kivikesi. Kasvuhoone keskmine päevane ja öine temperatuur hiliskevadel ja suvel oli vastavalt 32±2°C ja 28±2°C. Suhteline õhuniiskus on kuni >70%. Kastmiseks kasutage udusüsteemi. Keskmiselt kastetakse taimi 12 korda päevas. Sügisel ja suvel on iga kastmise aeg 8 minutit, kastmisintervall on 1 tund. Taimi kasvatati sarnaselt neli korda, 2, 4, 6 ja 8 nädalat pärast külvi, mikrotoitainete lahusega (Ghoncheh Co., Iraan) kontsentratsiooniga 3 ppm ja kasteti iga kord 100 ml lahusega. Toitelahus sisaldab N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm ja mikroelemente Fe, Pb, Zn, Mn, Mo ja B.
Gibberelliinhappe ja taimekasvuregulaatori bensüüladeniini (ostetud firmalt Sigma) kolmes kontsentratsioonis valmistati lahused kontsentratsioonidega 0, 100 ja 200 mg/l ning pihustati taimepungadele kolmes etapis 15-päevase intervalliga17. Lahuses kasutati Tween 20 (0,1%) (ostetud firmalt Sigma), et suurendada selle püsivust ja imendumiskiirust. Varahommikul pihustati hormoone Liriodendron tulipifera pungadele ja lehtedele pihustiga. Taimi pritsiti destilleeritud veega.
Taime kõrgus, varre läbimõõt, lehepindala, klorofülli sisaldus, sõlmevahede arv, kõrvalharude pikkus, kõrvalharude arv, juure maht, juure pikkus, lehe, juure, varre ja kuivaine mass, fotosünteetiliste pigmentide (klorofüll a, klorofüll b) sisaldus. Erinevates töötlustes mõõdeti klorofülli, karotenoidide, pigmentide, redutseerivate suhkrute ja lahustuvate süsivesikute koguhulka.
Noorte lehtede klorofülli sisaldust mõõdeti 180 päeva pärast pritsimist, kasutades klorofüllimõõturit (Spad CL-01) kella 9.30–10.00 vahel (lehtede värskuse tõttu). Lisaks mõõdeti 180 päeva pärast pritsimist lehtede pindala. Kaaluti igast potist kolm lehte varre ülemisest, keskmisest ja alumisest osast. Neid lehti kasutati seejärel mallidena A4-paberil ja saadud muster lõigati välja. Mõõdeti ka ühe A4-paberi lehe kaal ja pindala. Seejärel arvutati šabloonitud lehtede pindala proportsioonide abil. Lisaks määrati juure maht mõõtesilindri abil. Lehe kuivkaal, varre kuivkaal, juure kuivkaal ja iga proovi kogu kuivkaal mõõdeti ahjus kuivatamisega temperatuuril 72 °C 48 tundi.
Klorofülli ja karotenoidide sisaldust mõõdeti Lichtenthaleri meetodil18. Selleks jahvatati 0,1 g värskeid lehti portselanuhmris, mis sisaldas 15 ml 80% atsetooni, ja pärast filtreerimist mõõdeti nende optilist tihedust spektrofotomeetriga lainepikkustel 663,2, 646,8 ja 470 nm. Kalibreerige seade 80% atsetooniga. Arvutage fotosünteetiliste pigmentide kontsentratsioon järgmise võrrandi abil:
Nende hulgas esindavad Chl a, Chl b, Chl T ja Car vastavalt klorofüll a, klorofüll b, kogu klorofülli ja karotenoide. Tulemused on esitatud mg/ml taime kohta.
Redutseerivate suhkrute sisaldust mõõdeti Somogy meetodil19. Selleks jahvatatakse 0,02 g taimevõrseid portselanuhmris 10 ml destilleeritud veega ja valatakse väikesesse klaasi. Kuumutage klaas keemiseni ja seejärel filtreerige sisu Whatman nr 1 filterpaberi abil, et saada taimeekstrakt. Kandke 2 ml igast ekstraktist katseklaasi ja lisage 2 ml vasksulfaadi lahust. Katke katseklaas vatitupsuga ja kuumutage veevannis temperatuuril 100 °C 20 minutit. Selles etapis muundatakse Cu2+ aldehüüdmonosahhariidi redutseerimise teel Cu2O-ks ja katseklaasi põhjas on näha lõhe (terrakota) värvus. Pärast katseklaasi jahtumist lisage 2 ml fosfomolübdeenhapet ja ilmub sinine värvus. Loksutage katseklaasi jõuliselt, kuni värvus on kogu katseklaasis ühtlaselt jaotunud. Lugege lahuse neeldumist 600 nm juures, kasutades spektrofotomeetrit.
Arvutage redutseerivate suhkrute kontsentratsioon standardkõvera abil. Lahustuvate süsivesikute kontsentratsioon määrati Falesi meetodil20. Selleks segati 0,1 g idusid 2,5 ml 80% etanooliga temperatuuril 90 °C 60 minutit (kaks 30-minutilist etappi), et ekstraheerida lahustuvaid süsivesikuid. Seejärel ekstrakt filtreeritakse ja alkohol aurustatakse. Saadud sade lahustatakse 2,5 ml destilleeritud vees. Valage 200 ml igast proovist katseklaasi ja lisage 5 ml antroonindikaatorit. Segu asetati 17 minutiks veevanni temperatuuril 90 °C ja pärast jahutamist määrati selle neeldumist lainepikkusel 625 nm.
Katse oli faktoriaalkatse, mis põhines täielikult randomiseeritud disainil ja millel oli neli kordust. PROC UNIVARIATE protseduuri kasutatakse andmejaotuste normaalsuse uurimiseks enne dispersioonanalüüsi. Statistiline analüüs algas kirjeldava statistilise analüüsiga, et mõista kogutud toorandmete kvaliteeti. Arvutused on loodud suurte andmekogumite lihtsustamiseks ja kokkusurumiseks, et neid oleks lihtsam tõlgendada. Seejärel viidi läbi keerukamad analüüsid. Duncani test viidi läbi SPSS tarkvaraga (versioon 24; IBM Corporation, Armonk, NY, USA), et arvutada keskmisi ruute ja eksperimentaalseid vigu, et määrata andmekogumite vahelisi erinevusi. Duncani mitmekordset testi (DMRT) kasutati keskmiste erinevuste tuvastamiseks olulisuse tasemel (0,05 ≤ p). Pearsoni korrelatsioonikordaja (r) arvutati SPSS tarkvaraga (versioon 26; IBM Corp., Armonk, NY, USA), et hinnata korrelatsiooni erinevate parameetripaaride vahel. Lisaks viidi läbi lineaarne regressioonanalüüs SPSS tarkvaraga (v.26), et ennustada esimese aasta muutujate väärtusi teise aasta muutujate väärtuste põhjal. Teisest küljest viidi läbi astmeline regressioonanalüüs p < 0,01, et teha kindlaks tunnused, mis mõjutavad kriitiliselt kääbuskääbuse lehti. Teekonnaanalüüs viidi läbi, et määrata kindlaks iga atribuudi otsene ja kaudne mõju mudelis (põhinedes tunnustel, mis selgitavad variatsiooni paremini). Kõik ülaltoodud arvutused (andmete jaotuse normaalsus, lihtne korrelatsioonikordaja, astmeline regressioon ja teekonnaanalüüs) tehti SPSS V.26 tarkvara abil.
Valitud kultuurtaimede proovid vastasid Iraani asjakohastele institutsioonilistele, riiklikele ja rahvusvahelistele suunistele ning siseriiklikele õigusaktidele.
Tabel 1 näitab erinevate tunnuste keskmise, standardhälbe, miinimumi, maksimumi, vahemiku ja fenotüübilise variatsioonikordaja (CV) kirjeldavat statistikat. Nende statistikate hulgas võimaldab CV tunnuste võrdlemist, kuna see on dimensioonita. Redutseerivatel suhkrutel (40,39%), juurte kuivkaalul (37,32%), juurte värskel kaalul (37,30%), suhkru ja suhkru suhtel (30,20%) ning juurte mahul (30%) on kõrgeimad näitajad. Klorofülli sisaldusel (9,88%) ja lehtede pindalal on kõrgeim indeks (11,77%) ja madalaim CV väärtus. Tabel 1 näitab, et kogu märgkaalul on kõrgeim vahemik. Sellel tunnusel pole aga kõrgeimat CV-d. Seetõttu tuleks tunnuste muutuste võrdlemiseks kasutada dimensioonita mõõdikuid, näiteks CV-d. Kõrge CV näitab suurt erinevust selle tunnuse töötluste vahel. Selle katse tulemused näitasid suuri erinevusi madala suhkrusisaldusega töötluste vahel juurte kuivkaalu, värske juurte kaalu, süsivesikute ja suhkru suhte ning juurte mahu omaduste osas.
ANOVA tulemused näitasid, et võrreldes kontrollgrupiga oli gibberelliinhappe ja bensüüladeniiniga lehtedele pritsimisel oluline mõju taime kõrgusele, lehtede arvule, lehepindalale, juurte mahule, juurte pikkusele, klorofülli indeksile, värskele kaalule ja kuivkaalule.
Keskmiste väärtuste võrdlus näitas, et taimekasvuregulaatoritel oli oluline mõju taime kõrgusele ja lehtede arvule. Kõige efektiivsemateks töötlusteks olid gibberelliinhape kontsentratsioonis 200 mg/l ja gibberelliinhape + bensüüladeniin kontsentratsioonis 200 mg/l. Võrreldes kontrollgrupiga suurenesid taime kõrgus ja lehtede arv vastavalt 32,92 ja 62,76 korda (tabel 2).
Lehepindala suurenes kõigis variantides kontrollrühmaga võrreldes märkimisväärselt, kusjuures maksimaalne suurenemine täheldati gibberelliinhappe kontsentratsioonil 200 mg/l, ulatudes 89,19 cm2-ni. Tulemused näitasid, et lehepindala suurenes märkimisväärselt kasvuregulaatori kontsentratsiooni suurenemisega (tabel 2).
Kõik töötlused suurendasid juure mahtu ja pikkust kontrollrühmaga võrreldes oluliselt. Gibberelliinhappe ja bensüüladeniini kombinatsioonil oli suurim mõju, mis suurendas juure mahtu ja pikkust poole võrra kontrollrühmaga võrreldes (tabel 2).
Varre läbimõõdu ja sõlmevahede pikkuse suurimad väärtused täheldati vastavalt kontrollrühmas ja gibberelliinhappe + bensüüladeniin 200 mg/l töötlustes.
Klorofülliindeks suurenes kõigis variantides võrreldes kontrollgrupiga. Selle tunnuse kõrgeim väärtus täheldati gibberelliinhappe ja bensüüladeniiniga 200 mg/l töötlemisel, mis oli 30,21% kõrgem kui kontrollgrupis (tabel 2).
Tulemused näitasid, et töötlemine põhjustas olulisi erinevusi pigmendisisalduses, suhkrute ja lahustuvate süsivesikute vähenemises.
Gibberelliinhappe ja bensüüladeniiniga töötlemine andis tulemuseks fotosünteetiliste pigmentide maksimaalse sisalduse. See näitaja oli kõigis variantides oluliselt kõrgem kui kontrollrühmas.
Tulemused näitasid, et kõik töötlused suutsid suurendada Schefflera kääbuse klorofülli sisaldust. Selle tunnuse kõrgeim väärtus täheldati aga gibberelliinhappe ja bensüüladeniiniga töötlemisel, mis oli 36,95% kõrgem kui kontrollrühmas (tabel 3).
Klorofüll b tulemused olid täiesti sarnased klorofüll a tulemustega, ainus erinevus oli klorofüll b sisalduse suurenemine, mis oli 67,15% suurem kui kontrollgrupis (tabel 3).
Töötlemine tõi kaasa klorofülli koguhulga olulise suurenemise võrreldes kontrollrühmaga. Töötlemine gibberelliinhappega 200 mg/l + bensüüladeniiniga 100 mg/l andis selle tunnuse kõrgeima väärtuse, mis oli 50% kõrgem kui kontrollrühmas (tabel 3). Tulemuste kohaselt andsid kontrollrühm ja töötlemine bensüüladeniiniga annuses 100 mg/l selle tunnuse kõrgeima määra. Karotenoidide kõrgeim väärtus on Liriodendron tulipifera'l (tabel 3).
Tulemused näitasid, et gibberelliinhappega töötlemisel kontsentratsioonil 200 mg/l suurenes klorofüll a sisaldus märkimisväärselt klorofüll b-ni (joonis 1).
Giberelliinhappe ja bensüüladeniini mõju a/b Ch-le. Kääbusšeflera osakaal. (GA3: giberelliinhape ja BA: bensüüladeniin). Samad tähed igal joonisel näitavad, et erinevus ei ole oluline (P < 0,01).
Iga töötluse mõju kääbus-šeflera puidu värskele ja kuivkaalule oli oluliselt suurem kui kontrollrühmal. Gibberelliinhappe + bensüüladeniin kontsentratsioonis 200 mg/l oli kõige efektiivsem töötlus, mis suurendas värsket kaalu kontrollrühmaga võrreldes 138,45%. Võrreldes kontrollrühmaga suurendasid kõik töötlused peale 100 mg/l bensüüladeniini oluliselt taime kuivkaalu ning 200 mg/l gibberelliinhappe + bensüüladeniini andis selle tunnuse puhul kõrgeima väärtuse (tabel 4).
Enamik variante erines selles osas kontrollvariandist oluliselt, kusjuures kõrgeimad väärtused kuulusid 100 ja 200 mg/l bensüüladeniini ning 200 mg/l gibberelliinhappe + bensüüladeniini kontsentratsioonidele (joonis 2).
Giberelliinhappe ja bensüüladeniini mõju lahustuvate süsivesikute ja redutseerivate suhkrute suhtele kääbus-šefleradel. (GA3: giberelliinhape ja BA: bensüüladeniin). Samad tähed igal joonisel näitavad olulise erinevuse puudumist (P < 0,01).
Tegelike omaduste kindlaksmääramiseks ja sõltumatute muutujate ning lehtede arvu vahelise seose paremaks mõistmiseks Liriodendron tulipifera puhul viidi läbi astmeline regressioonanalüüs. Juurte maht oli esimene mudelisse sisestatud muutuja, mis selgitas 44% variatsioonist. Järgmine muutuja oli värske juure kaal ja need kaks muutujat selgitasid 63% lehtede arvu variatsioonist (tabel 5).
Samm-sammulise regressiooni paremaks tõlgendamiseks viidi läbi teekonna analüüs (tabel 6 ja joonis 3). Suurim positiivne mõju lehtede arvule oli seotud värske juurte massiga (0,43), mis oli positiivses korrelatsioonis lehtede arvuga (0,47). See näitab, et see tunnus mõjutab saagikust otseselt, samas kui selle kaudne mõju teiste tunnuste kaudu on tühine ning et seda tunnust saab kasutada valikukriteeriumina kääbusšeflera aretusprogrammides. Juurte mahu otsene mõju oli negatiivne (−0,67). Selle tunnuse mõju lehtede arvule on otsene, kaudne mõju on ebaoluline. See näitab, et mida suurem on juurte maht, seda väiksem on lehtede arv.
Joonis 4 näitab juuremahu ja redutseerivate suhkrute lineaarse regressiooni muutusi. Regressioonikordaja kohaselt tähendab iga juurepikkuse ja lahustuvate süsivesikute ühikumuutus juuremahu ja redutseerivate suhkrute muutust vastavalt 0,6019 ja 0,311 ühiku võrra.
Kasvutunnuste Pearsoni korrelatsioonikordaja on näidatud joonisel 5. Tulemused näitasid, et lehtede arvul ja taime kõrgusel (0,379*) oli kõrgeim positiivne korrelatsioon ja olulisus.
Kasvukiiruse korrelatsioonikordajate muutujate vaheliste seoste soojuskaart. # Y-telg: 1 – indekshõlm, 2 – sõlmevahe, 3 – lai leht (LAI), 4 – lehtede N arv, 5 – varte kõrgus, 6 – varre läbimõõt. # Mööda X-telge: A – indekshõlm, B – sõlmede vaheline kaugus, C – lai leht (LAY), D – lehe N. arv, E – püksisääre kõrgus, F – varre läbimõõt.
Märgkaaluga seotud omaduste Pearsoni korrelatsioonikordaja on näidatud joonisel 6. Tulemused näitavad seost lehtede märgkaalu ja maapealse kuivkaalu (0,834**), kogukuivkaalu (0,913**) ja juurte kuivkaalu (0,562*) vahel. Kogukuivmassil on kõrgeim ja olulisem positiivne korrelatsioon võrse kuivmassi (0,790**) ja juurte kuivmassiga (0,741**).
Värske kaalu korrelatsioonikordaja muutujate vaheliste seoste soojuskaart. # Y-telg: 1 – värskete lehtede kaal, 2 – värskete pungade kaal, 3 – värskete juurte kaal, 4 – värskete lehtede kogukaal. # X-telg tähistab: A – värske lehe kaal, B – värske pungade kaal, CW – värske juurte kaal, D – värske kogukaal.
Pearsoni korrelatsioonikordajad kuivkaaluga seotud tunnuste jaoks on näidatud joonisel 7. Tulemused näitavad, et lehe kuivkaalul, pungade kuivkaalul (0,848**) ja kogukuivkaalul (0,947**), pungade kuivkaalul (0,854**) ja kogukuivmassil (0,781**) on kõrgeimad väärtused. Positiivne korrelatsioon ja oluline korrelatsioon.
Kuivmassi korrelatsioonikordaja muutujate vaheliste seoste soojuskaart. # Y-telg tähistab: 1-lehe kuivmassi, 2-punga kuivmassi, 3-juure kuivmassi, 4-kogukuivmassi. # X-telg: A-lehe kuivmass, B-punga kuivmass, CW-juure kuivmass, D-kogukuivmass.
Pigmentide omaduste Pearsoni korrelatsioonikordaja on näidatud joonisel 8. Tulemused näitavad, et klorofüll a ja klorofüll b (0,716**), klorofülli koguhulk (0,968**) ja pigmentide koguhulk (0,954**); klorofüll b ja klorofülli koguhulk (0,868**) ning pigmentide koguhulk (0,851**); klorofülli koguhulgal on kõrgeim positiivne ja oluline korrelatsioon pigmentide koguhulgaga (0,984**).
Klorofülli korrelatsioonikordaja muutujate vaheliste seoste soojuskaart. # Y-teljed: 1 - kanal a, 2 - kanal b, 3 - a/b suhe, 4 kanalit. Kokku, 5-karotenoidid, 6-pigmendi saagis. # X-teljed: A - kanal a, B - kanal b, C - a/b suhe, D - kanal E-karotenoidide kogusisaldus, F - pigmentide saagis.
Kääbus-šeflera on populaarne toataim kogu maailmas ning selle kasvule ja arengule pööratakse praegu palju tähelepanu. Taimekasvuregulaatorite kasutamine põhjustas olulisi erinevusi, kusjuures kõik töötlused suurendasid taimede kõrgust võrreldes kontrollrühmaga. Kuigi taimede kõrgust kontrollitakse tavaliselt geneetiliselt, näitavad uuringud, et taimekasvuregulaatorite kasutamine võib taimede kõrgust suurendada või vähendada. Gibberelliinhappe + bensüüladeniini 200 mg/l-ga töödeldud taimede kõrgus ja lehtede arv olid kõrgeimad, ulatudes vastavalt 109 cm ja 38,25 cm-ni. Kooskõlas varasemate uuringutega (SalehiSardoei jt52) ja Spathiphyllum23-ga täheldati sarnast taimede kõrguse suurenemist gibberelliinhappega töötlemise tõttu potis kasvatatud saialilledel, valgel saialillel21, päevaliiliatel22, päevaliiliatel, agarpuul ja rahuliiliatel.
Giberelliinhape (GA) mängib olulist rolli taimede erinevates füsioloogilistes protsessides. See stimuleerib rakkude jagunemist, rakkude pikenemist, varre pikenemist ja suuruse suurenemist24. GA indutseerib rakkude jagunemist ja pikenemist võrse tippudes ja meristeemides25. Lehtede muutuste hulka kuuluvad ka varre paksuse vähenemine, väiksem lehe suurus ja eredam roheline värvus26. Uuringud, mis kasutavad inhibeerivaid või stimuleerivaid faktoreid, on näidanud, et sisemistest allikatest pärinevad kaltsiumiioonid toimivad sorgo kroolla giberelliini signaaliülekande rajas sekundaarsete virgatsainetena27. HA suurendab taime pikkust, stimuleerides rakuseina lõdvestumist põhjustavate ensüümide, näiteks XET või XTH, ekspansiinide ja PME28, sünteesi. See põhjustab rakkude suurenemist, kuna rakusein lõdvestub ja vesi siseneb rakku29. GA7, GA3 ja GA4 kasutamine võib suurendada varre pikenemist30,31. Giberelliinhape põhjustab kääbustaimedel varre pikenemist ja rosetitaimedel aeglustab see lehtede kasvu ja sõlmevahede pikenemist32. Enne paljunemisfaasi suureneb varre pikkus aga 4–5 korda oma algsest kõrgusest33. GA biosünteesi protsess taimedes on kokku võetud joonisel 9.
GA biosüntees taimedes ja endogeense bioaktiivse GA tasemed, taimede (paremal) ja GA biosünteesi (vasakul) skemaatiline esitus. Nooled on värvikoodiga tähistatud vastavalt biosünteesi rajal näidatud HA vormile; punased nooled näitavad GC taseme langust taimeorganites lokaliseerumise tõttu ja mustad nooled näitavad GC taseme tõusu. Paljudes taimedes, näiteks riisis ja arbuusis, on GA sisaldus suurem lehe aluses või alumises osas30. Lisaks näitavad mõned aruanded, et bioaktiivse GA sisaldus väheneb lehtede pikenedes alusest34. Gibberelliinide täpne tase nendel juhtudel ei ole teada.
Taimekasvuregulaatorid mõjutavad oluliselt ka lehtede arvu ja pindala. Tulemused näitasid, et taimekasvuregulaatori kontsentratsiooni suurendamine tõi kaasa lehtede pindala ja arvu olulise suurenemise. On teatatud, et bensüüladeniin suurendab kalla lehtede tootmist15. Selle uuringu tulemuste kohaselt parandasid kõik töötlused lehtede pindala ja arvu. Giberelliinhape + bensüüladeniin oli kõige tõhusam töötlus ning andis tulemuseks suurima lehtede arvu ja pindala. Kääbus-šeflera kasvatamisel siseruumides võib lehtede arv märgatavalt suureneda.
GA3-töötlus suurendas sõlmevahede pikkust võrreldes bensüüladeniiniga (BA) või hormonaalse töötlemiseta. See tulemus on loogiline, arvestades GA rolli kasvu soodustamisel7. Sarnaseid tulemusi näitas ka varre kasv. Giberelliinhape suurendas varre pikkust, kuid vähendas selle läbimõõtu. BA ja GA3 kombineeritud manustamine suurendas aga oluliselt varre pikkust. See suurenemine oli suurem võrreldes BA-ga töödeldud või hormoonita taimedega. Kuigi giberelliinhape ja tsütokiniinid (CK) üldiselt soodustavad taimede kasvu, on neil mõnel juhul erinevatele protsessidele vastupidine mõju35. Näiteks täheldati GA ja BA-ga töödeldud taimedel hüpokotüüli pikkuse suurenemises negatiivset interaktsiooni36. Teisest küljest suurendas BA oluliselt juurte mahtu (tabel 1). Eksogeense BA tõttu suurenenud juurte mahtu on täheldatud paljudel taimedel (nt Dendrobium ja Orchid liigid)37,38.
Kõik hormonaalsed töötlused suurendasid uute lehtede arvu. Lehepinna ja varre pikkuse loomulik suurenemine kombineeritud töötluste abil on kaubanduslikult soovitav. Uute lehtede arv on vegetatiivse kasvu oluline näitaja. Eksogeensete hormoonide kasutamist ei ole Liriodendron tulipifera kaubanduslikus tootmises kasutatud. GA ja CK kasvu soodustav toime, kui seda tasakaalustatult manustada, võib aga anda uusi teadmisi selle taime kasvatamise parandamiseks. Märkimisväärselt oli BA + GA3 töötlemise sünergistlik toime suurem kui GA või BA eraldi manustatud toimel. Giberelliinhape suurendab uute lehtede arvu. Uute lehtede arenedes võib uute lehtede arvu suurendamine piirata lehtede kasvu39. GA on teatatud parandavat sahharoosi transporti neeldajatest allikorganitesse40,41. Lisaks võib GA eksogeenne manustamine mitmeaastastele taimedele soodustada vegetatiivsete organite, näiteks lehtede ja juurte kasvu, takistades seeläbi üleminekut vegetatiivselt kasvult reproduktiivsele kasvule42.
GA mõju taime kuivainesisalduse suurendamisele saab seletada fotosünteesi suurenemisega lehepindala suurenemise tõttu43. On teatatud, et GA põhjustab maisi lehepindala suurenemist34. Tulemused näitasid, et BA kontsentratsiooni suurendamine 200 mg/l-ni võib suurendada sekundaarsete harude pikkust ja arvu ning juurte mahtu. Giberelliinhape mõjutab rakuprotsesse, näiteks stimuleerib rakkude jagunemist ja pikenemist, parandades seeläbi vegetatiivset kasvu43. Lisaks laiendab HA rakuseina tärklise suhkruks hüdrolüüsimise teel, vähendades seeläbi raku veepotentsiaali, põhjustades vee sisenemist rakku ja viides lõpuks raku pikenemiseni44.
Postituse aeg: 11. juuni 2024